дезінфекційний режим

Лабораторні інструменти, голки, капіляри, предметні скельця, пробірки, меланжери, рахункові камери, кювети фотоелектр-трокалоріметра, піпетки, наконечники, гумові груші та інший посуд після кожного використання повинні піддаватися дезінфекції.

Використані вироби промивають в ємності з водою. Промивні води знезаражують кип'ятінням протягом 30 хв або засипають сухим хлорним вапном у співвідношенні 200 г на 1 л, перемішують і знезаражують протягом 60 хв. Промиті вироби кип'ятять в закритій ємності в воді 30 хв або в 2% -ному розчині соди протягом 15 хв. (В разі кип'ятіння виробів в 2% -ному розчині соди подальша передстерилізаційне очищення не проводиться).

Лабораторні інструменти можуть бути знезаражені зануренням в дезінфікуючий розчин на 60 хв. В якості дезінфікуючих використовуються наступні розчини: 3% -ний розчин хлораміну; 6% -ний розчин перекису водню 6% -ний розчин перекису водню з 0,5% -м миючим засобом; 4% -ний розчин формаліну; 0,5% -ний розчин нейтрального гіпохлориту кальцію; 0,5% -ний сульфохлорантин.

Вироби повинні бути повністю занурені в розчин. При дезінфекції виробів, що мають внутрішні канали, розчин де-зінфектанта спочатку прокачують через них за допомогою груші для видалення залишків біологічного матеріалу, а потім занурюють у нову ємність, заповнену дезрозчином.

Ємності для дезрастворов повинні бути чітко промарковані і мати кришки. У маркуванні ємності вказують: назву дез-розчину, його концентрацію, призначення і дату приготування. Розчини дезінфектантів використовуються одноразово.

Розчини перекису водню готують щодня, хлораміну - на два тижні, хлорного вапна, НГК - на шість днів. Заміна дезраствора в робочих ємностях проводиться щодня.

Кварцові, скляні, пластмасові кювети вимірювальної апаратури, пластикові пробірки апаратури знезаражують зануренням в 6% -ний розчин перекису водню і промивають проточною водою.

З предметних стекол з фіксованим і пофарбованим мазком крові після проведення мікроскопії видаляють залишки иммерсионного масла, скла кип'ятять в мильному розчині не менше 15 хв до повного відходження фарби, потім промивають проточною водою, підсушують на повітрі і протирають.

Залишки крові, сечі, спинномозкової рідини і т. Д. Проби, що містять розведену сироватку без додавання кислот, лугів, зливають в спеціальну тару і знезаражують сухим хлорним вапном у співвідношенні 1: 5 протягом 1 ч. Посуд з-під сечі, калу обробляють дезрозчином, але не стерилізують.

Для знезараження поверхонь робочих столів, ємностей для транспортування матеріалу і т. П. Проводять їх дворазове обтирання дрантям, змоченою 6% -ним розчином НГК, 0,5% -ним розчином сульфохлорантіна. Використану ганчір'я скидають у спеціально виділену ємність з дезинфікуючим розчином, марковану «Для дезінфекції використаної дрантя».

Рукавички після закінчення роботи знезаражують зануренням в 3% -ний розчин хлораміну або 6% -ний розчин перекису водню на 1 ч.

Одноразовий інструментарій та посуд утилізують в паровому стерилізаторі (режим: температура 132 ° С; тиск - 2 кгс / см2. Час - 30 хв), після чого викидають. Ефективність знезараження при цьому контролюють по розплавлення хімічного тесту.

Робота в бактеріологічних лабораторіях з мікроорганізмами III-V груп патогенності

При роботі в бактеріологічних лабораторіях з мікроорганізмами III-IV груп патогенності в додаток до вищесказаного дотримується ряд правил, обумовлених присутністю свідомо інфікованого матеріалу і чистих культур мікроорганізмів.

Весь інструментарій повинен бути дезінфікований обпаленням або занурений в банки з дезинфікуючим розчином безпосередньо після використання.

Після завершення робіт персонал бактеріологічних лабораторій зобов'язаний провести дезінфекцію робочого столу і рук, боксу, приміщення. Підлоги миють із застосуванням дезинфікуючого розчину, меблі та обладнання протирають змоченою дезрастворе дрантям. Приміщення боксу не рідше 1 разу на тиждень миють гарячою водою з миючими та дезінфікуючими засобами. Після закінчення прибирання приміщення опромінюють бактерицидними лампами протягом 30-60 хв. Лампи встановлюють з розрахунку потужності 2,5 Вт / м3.

Вологе прибирання приміщень лабораторії проводиться щодня з застосуванням миючих і дезінфікуючих засобів. Один раз в місяць в приміщеннях, де проводиться робота з кров'ю, сироваткою, роблять генеральне прибирання з використанням 3% -ного розчину хлораміну, хлорного вапна і т. Д. Під час генерального прибирання ретельно миють стіни, обладнання, меблі, проводять очистку підлог від нашарувань, плям і т. д.

Генеральні прибирання проводять за затвердженим графіком.

Передстерилізаційна очищення і стерилізація

Після дезінфекції лабораторний інструментарій, дотичний з рани поверхнею або слизовими оболонками обстежуваного, підлягає обов'язковій предстерилизационной очищення і стерилізації відповідно до ОСТ 42-21-2-85 «Стерилізація і дезінфекція. виробів медичного призначення ». Предстерилизационную очистку проводять із застосуванням миючих розчинів. Для приготування 1 л миючого розчину відмірюють 5 г прального порошку без біодобавок, 16 мл 33% -ного розчину перекису водню і 979 мл води. Миючий розчин можна використовувати протягом доби, якщо колір розчину не змінився.

При проведенні очищення вироби замочують при повному зануренні в миючому розчині, підігрітому до +50 ° С, на 15 хв. Кожен виріб миють в розчині за допомогою йоржа і ватно-марлевій вого тампона не менше 0,5 хв, потім споліскують проточною водою протягом 10 хв, а потім - дистильованою водою.

Якість передстерилізаційного очищення виробів оцінюють на наявність крові шляхом постановки амідопіринової або азопірамової проби, на наявність залишкових кількостей лужних компонентів миючого речовини - шляхом фенолфталеїнової проби.
Самоконтроль в КДЛ проводять щодня, контролю піддають не менше 1% оброблених виробів одного найменування, але не менше 3-5 одиниць.
При позитивній пробі на кров або миючий засіб всю групу контрольованих виробів піддають повторній обробці до отримання негативних результатів.
Після передстерилізаційного очищення проводять стерилізацію інструментарію і посуду.
Стерилізація - це повне знищення мікроорганізмів і їх спор. Методи, засоби і режими стерилізації виробів медичного призначення визначені стандартом ОСТ 42-21 -2-85.

Використовувані в лабораторній практиці методи стерилізації можна поділити на кілька груп.

• Фізичні методи: стерилізація паром; стерилізація повітряна; стерилізація випромінюванням.
• Хімічні методи: стерилізація газами; стерилізація розчинами.

Стерилізація парою під тиском є ​​найбільш універсальним методом. Вона реалізується за допомогою спеціального пристрою - парового стерилізатора (автоклава).

Вибір режиму стерилізації визначається видом матеріалу.
До роботи на парових стерилізаторах допускаються тільки особи, які пройшли спеціальне навчання і мають посвідчення на право роботи встановленого зразка. Не рідше ніж раз на 3 роки знання такої особи підлягають повторній перевірці з відповідною відміткою в посвідченні.

Повітряний метод стерилізації

Повітряний метод стерилізації використовується в разі, якщо обробці піддаються вироби або матеріали, які не можна стерилізувати парою, наприклад масла, порошки, а також вироби, виконані з коррозирующих металів, скла і термостійких пластиків (силіконової гуми).

Для проведення обробки використовують повітряні стерилізатори-Гіссен.

В ОСТ 42-21-2-85 наводяться режими стерилізації виробів медичного призначення з використанням сухого гарячого повітря:

• 180 ° С при часу експозиції 60 хв;
• 160 ° С при часу експозиції 150 хв.

Весь цикл роботи стерилізатора включає час на розігрів стерилізатора, час на стерилізацію апарату і зазвичай становить 2-4 год в залежності від обсягу стерилізаційної камери і кількості виробів, що стерилізуються.

В повітряні стерилізатори дозволяється укладати тільки чисті та сухі вироби, причому останні або поміщаються в металеві контейнери, або упаковуються в пакети з крафт-паперу.

Шви на паперових пакетах заклеюють клеєм, що складається з 10% -ного полівінілового спирту або 5% -ного крохмалю. В упаковці з паперу час зберігання стерильних виробів становить не більше 3-х діб. Вироби, простерилізовані без упаковки, повинні бути використані безпосередньо після стерилізації.

Контроль за проведенням стерилізації

Контроль за проведенням стерилізації передбачає проведення контролю режимів стерилізації та контроль стерильності вироби.

Співробітники ЛПУ здійснюють самоконтроль режиму стерилізації за допомогою хімічних тестів, наприклад термохімічних індикаторів, що випускаються НПФ «Винар», які змінюють свій колір залежно від способу і режиму стерилізації.

Найбільш вірогідно оцінити ефективність роботи стерилізатора дозволяє бактеріологічний метод. У нашій країні відповідно до «Методичних вказівок по контролю роботи парових і повітряних стерилізаторів» (МУ № 16 / 6-5 28.2.91) в якості биотестов використовують висушені суперечки Bacillus Stearothermophilus (штам G) - для контролю повітряних стерилізаторів.

Хімічні методи стерилізації

Хімічні методи стерилізації в лабораторній практиці використовуються вкрай рідко, т. К. Стерилізація розчинами в умовах лабораторії не технологічна. Простерилизованное виріб необхідно відмивати від стерилізатором великими обсягами стерильної води в асептичних умовах, а терміни зберігання стерильних виробів, перенесених після обробки в заздалегідь простерилізовані ємності, не великі (не більше 3 діб).