Препарати для лікування і профілактики стаф-лококкових інфекцій

У зв'язку з множинною стійкістю клінічних штамів збудників до хіміотера-певтіческім препаратів перед початком етіотропної терапії не-обходимо визначення антібіотікочувствітельності виділеного штаму стафілокока.

Хіміотерапевтичні схеми ле-чення інфекцій, які обумовлені стафілококами, чутливими до метициліну (оксациліну) та стійкими до метициліну (оксациліну), раз-особистих. Для лікування першої групи стафілококових інфекцій можуть бути використані антибіотики: цефалоспорини 1-4 поко-ління, напівсинтетичні пеніциліни, стійкі до пеніціл-ліназам (метицилін, оксацилін), амінопеніцилінів в поєднанні з клавулановою кислотою (амоксицилін / клавуланат, ампіцилін / сульбактам), карбапенеми , глікопептиди, фторхінолони, аміноглікозиди, макроліди, міноціклін, триметоприм / сульфаметоксазол. Хіміотерапевтичний спектр впливу на метицилінстійкі стафілококи дуже вузький і включає: глікопептиди (ванкоміцин, тейкопланін) і фузидієвої кислоту.

При хронічних формах стафілококових інфекцій рекомендують аутовакцину, що представляє собою інактивовану суспензію чистої культури клінічного штаму, виділеного від даного пацієнта; а також стафілококову інактивовану, полі-валентну вакцину з суспензії коагулазоположітельних штамів стафілокока.

Для імунотерапії хронічних стафілококових інфекцій застосовують також антифагин стафілококовий (фільтрат культур інактивованих вірулентних штамів стафілококів).

Для лікування стафілококових інфекцій і їх профілактики у вагітних, новонароджених, ослаблених осіб з імунодефіцитом, використовується очищений, адсорбований на гидроксиде алюмінію стафілококовий анатоксин.

У випадках тя-желих інтоксикацій і сепсису, показано застосування людського антистафилококкового імуноглобуліну з крові донорів, імунізованих стафілококовим анатоксином.

Для лікування і санації стафілококконосітелей місцево і парентерально використовують стафілококовий бактеріофаг.

Лабораторна діагностика стрептококових інфекцій

Використовують: бактериоскопический, бактеріологічний, серологічний і біологічний методи досліджень.

Бактеріоскопічний метод. Як матеріал для ис-проходження беруть гнійневідокремлюване, мокроту, в разі сеп-Сиса - кров. З досліджуваного матеріалу готують мазки, окра-шивают по Граму і проводять мікроскопію. Попередній діагноз грунтується на виявленні грампозитивних кулястих кок-ков розміром 0,6-1,0 мкм, розташованих переважно ланцюжками і попарно.

Бактеріологічний метод. Проводять посів досліджуваного матеріалу (гній, мокротиння, сеча, кров та ін.) На спеціальні середовища: цукровий бульйон і агар, для виявлення гемолітичних властивостей - на кров'яний агар.

Виділену чисту культуру ідентифікують за морфологи-ного, культуральними, біохімічними, антигенними і токсіген-ним властивостям. Найбільш важливими тестами є: вид гемолізу на кров'яному агарі; каталазная активність; чутливість до бацитрацину, сульфаметоксазол і триметоприму; САМР-тест; гідроліз гіппурат натрію; жовчно-ескуліновий тест; зростання в бульйоні з 6,5% NaCl; наявність пірролідоніларіламідази (PYR), і характер групового полисахаридного антигену.

За картині гемолізу на кров'яному агарі стрептококи поділяють на три групи. -гемолітичні стрептококи, викликають повний лізис еритроцитів, що спостерігається у вигляді повного просвітління середовища навколо колонії. -гемолітичні або «зеленящий» стрептококи, викликають частковий гемоліз і утворюють колонії, оточені зоною зеленуватого відтінку, що зумовлено перетворенням гемоглобіну в метгемоглобін. Третю групу складають негемолітичні стрептококи, які не викликають гемолізу на кров'яному агарі.

Каталазна активність визначається по виділенню бульбашок газу при змішуванні досліджуваної культури з краплею 3-10% розчину перекису водню на предметному склі.

Чутливість до вищевказаних хіміопрепаратів досліджують методом індикаторних ( «паперових») дисків.

САМР тест заснований на здатності стрептококів продукувати екстрацелюлярний протеїн, підсилює лізис еритроцитів на кров'яному агарі при спільному культивуванні з золотистим стафілококом, які продукують -лізин.

Для визначення гідролізу гіппурат натрію петлю чисту культуру досліджуваного штаму суспендують в 0,4 мл 1% водного розчину гіппурат натрію, а через 2 години інкубації додають 0,2 мл 3,5% розчину нингидрина в суміші бутанола і ацетону (1: 1). Позитивним результатом є пурпурне забарвлення протягом 10 хвилин.

Для проведення жовчно-ескулінового тесту досліджувану культуру засівають на поживний агар з 40% жовчі, 0,1% ескуліну і 0,05% цитрату заліза. Позитивним результатом є утворення в живильному середовищі комплексу темно-коричневого кольору.

З метою виявлення ферменту пірролідоніларіламідази (PYR) досліджувану культуру засівають на поживний бульйон, що містить 0,01% L-пірролідона--нафтіламіда. Позитивною реакцією вважають яскраво-червоне забарвлення середовища при додаванні краплі діметіламіноаціннамальдегіда через 4 години.

Антигенну диференціацію стрептококів проводять по группоспецифических полісахариди клітинної стінки з допомогою антигенних діагностикумів в реакціях преципітації і латекс-аглютинації.

Серологічний метод. Для виявлення пиогенного стрептокока в патологічному матеріалі застосовують реакцію коагглютинации і пряму реакцію імунофлуоресценції (РІФ).

Реакція коагглютинации грунтується на застосуванні группоспецифических антитіл, сорбованих на клітинах золотистого стафілокока, проти -гемолітичного стрептокока. Тампон з досліджуваним матеріалом спочатку опускають в розчин для екстрагування полисахаридного стрептококкового антигену. Потім отриманий екстракт на предметному склі змішують з діагностикумів і через 2-3 хвилини враховують результат. Позитивною реакцією є випадання пластівців і просвітлення суспензії.

Для постановки РІФ використовують мічені флуорохромом протівострептококковие антитіла. Реакцію використовують для експрес-діагностики в нативному матеріалі і ідентифікації чистої культури збудника.

Біологічний метод. Використовують для діагностики цих інфекцій. З цією метою внутрибрюшинно заражають білих мишей, що володіють високою чутливістю до збудника, а потім через 1-5 днів з органів загиблих тварин роблять мазки-відбитки, проводять посів крові та перитонеального ексудату на поживні середовища. Попередній діагноз ставлять при виявленні ланцетовідних диплококков, оточених капсулою (відмінна риса S.pneumoniae). Подальшу ідентифікацію проводять шляхом бактеріологічних і серологічних досліджень.